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免疫印跡(Western Blot)的基本原理、實驗步驟
  • 發(fā)布日期:2018-03-15      瀏覽次數(shù):8364
    • WesternBlot原理
      WesternBlot采用的是聚丙烯酰胺凝膠電泳,被檢測物是蛋白質(zhì),“探針”是抗體,“顯色”用標記的二抗。SDS-PAGE可對蛋白質(zhì)樣品進行分離,轉(zhuǎn)移到固相載體——例如硝酸纖維素薄膜(NC)上。固相載體可以吸附蛋白質(zhì),并保持電泳分離的多肽類型及其生物學(xué)活性不變。轉(zhuǎn)移后的NC膜就稱為一個印跡(blot),用蛋白溶液(如5%BSA或脫脂奶粉溶液)處理,封閉NC膜上的疏水結(jié)合位點。用目標蛋白的抗體(一抗)處理NC膜——只有待研究的蛋白質(zhì)才能與一抗特異結(jié)合形成抗原抗體復(fù)合物,這樣清洗除去未結(jié)合的一抗后,只有在目標蛋白的位置上結(jié)合著一抗。用一抗處理過的NC膜再用標記的二抗處理,二抗是指一抗的抗體,如一抗是從鼠中獲得的,則二抗就是抗鼠IgG的抗體。處理后,帶有標記的二抗與一抗結(jié)合形成抗體復(fù)合物可以指示一抗的位置,即是待研究的蛋白質(zhì)的位置。

      (一)配膠

      1.將玻璃板洗凈,zui后用ddH2O沖洗,將與膠接觸的一面向下傾斜置于干凈的紙巾晾干。

      2.分離膠及濃縮膠均可事先配好(除AP及TEMED外),過濾后作為儲存液避光存放于4℃,可至少存放1個月,臨用前取出室溫平衡(否則凝膠過程產(chǎn)生的熱量會使低溫時溶解于儲存液中的氣體析出而導(dǎo)致氣泡),加入10%AP及TEMED即可。

      3.封膠:灌入2/3的分離膠后應(yīng)立即封膠,膠濃度<10%時可用0.1%的SDS封,濃度>10%時用異丁醇或異戊醇,也可以用0.1%的SDS。封膠后靜置至膠凝固。待膠凝后將封膠液倒掉,如用醇封膠需用大量清水及ddH2O沖洗干凈,然后加少量0.1%的SDS,目的是通過降低張力清除殘留水滴。

      4.灌好濃縮膠后1h拔除梳子,注意在拔除梳子時防止氣泡進入梳孔使梳孔變形。撥出梳子后用ddH2O沖洗膠孔兩遍以去除殘膠,隨后用0.1%的SDS封膠。若上樣孔有變形,可用適當粗細的針頭撥正。30min后上樣,長時間有利于膠結(jié)構(gòu)的形成,因為肉眼觀的膠凝時其內(nèi)部分子的排列尚未完成。(10%的AP現(xiàn)配現(xiàn)用,如在4℃存放勿超過兩周。30%的丙烯酰胺如有沉淀,棄掉)

       

      (二)樣品處理

      1.培養(yǎng)的細胞(定性):

      1)去培養(yǎng)液后用溫的PBS沖洗2~3遍(冷的PBS有可能使細胞脫落)。

      2)對于6孔板來說每孔加200~300uL,60~80℃的1×loadingbuffer。

      3)用細胞刮刮下細胞后在EP管中煮沸10min,期間vortex2~3次。

      4)用干凈的針尖挑絲,將團塊棄掉,如果沒有團塊但有拉絲現(xiàn)象,則可以將EP管置于0℃后在14000~16000g離心2min,再次挑絲。若無團塊也無絲狀物但溶液有些粘稠,可通過使用1ml注射器反復(fù)抽吸來降低溶液粘滯度,便于上樣。

      5)待樣品恢復(fù)到室溫后上樣。

      2.培養(yǎng)的細胞(定量):

      1)去培養(yǎng)液后用溫的PBS沖洗2~3遍(冷的PBS有可能使細胞脫落)。

      2)加入適量的冰預(yù)冷的裂解液后置于冰上10~20min。

      3)用細胞刮刮下細胞,收集在EP管后超聲(100~200w)3s,2次。

      4)12000g離心,4℃,2min。

      5)取少量上清進行定量。

      6)將所有蛋白樣品調(diào)至等濃度,充分混合沉淀后加loadingbuffer后直接上樣,剩余溶液(溶于1×loadingbuffer)可以低溫儲存,-70℃一個月,-20℃一周,4℃1~2天,每次上樣前98℃,3min。

      3.組織:

      1)心肝脾腎等組織可每50~100mg加1ml裂解液,肺100~200mg加1ml裂解液??墒謩踊螂妱觿驖{。注意盡量保持低溫,快速勻漿。

      2)12000g離心,4℃,2min。

      3)取少量上清進行定量。

      4)將所有蛋白樣品調(diào)至等濃度,充分混合沉淀加loadingbuffer后直接上樣,剩余溶液(溶于1×loadingbuffer)可以低溫儲存,每次上樣前98℃,3min。

       

      (三)電泳

      1)所有蛋白樣品調(diào)至等濃度后上樣,樣品兩側(cè)的泳道用等體積的1×loadingbuffer上樣,Marker也用1×loadingbuffer調(diào)整至與樣品等體積。
      2)以初始電壓為45V時的電流強度進行穩(wěn)流電泳,當電壓達65V時改為穩(wěn)壓電泳。

      3)在目的蛋白泳動至距膠下緣1cm以上結(jié)束。

       

      (四)轉(zhuǎn)膜

      1.電泳結(jié)束前20分鐘左右戴上手套開始準備:

      濕轉(zhuǎn)使用常規(guī)電轉(zhuǎn)液:Tris3.0g,Gly14.4g,M-OH200ml,加去離子水至1000ml。干轉(zhuǎn)則取此轉(zhuǎn)移液,每50ml加入180ul10%SDS。
      浸泡NC膜:將NC膜平鋪于去離子水面,待其自然吸水后再*浸入水中10min以排除氣泡,隨后浸泡入轉(zhuǎn)移液中。PVDF膜則在M-OH中浸泡20min以上后轉(zhuǎn)入轉(zhuǎn)移液中。將濾紙也浸入轉(zhuǎn)移液中。

      2.取膠:
      將膠卸下,保留30-100KD或分子量范圍更廣些的膠,左上切角,在轉(zhuǎn)移液中浸泡一下,置于潔凈玻璃板上,按順序鋪上膜與膜每側(cè)的一張(干轉(zhuǎn)每側(cè)三張)濾紙。用玻棒逐出氣泡后剪去濾紙與膜的過多部分(尤其是干轉(zhuǎn),以防止短路)。

      3.轉(zhuǎn)膜:
      濕轉(zhuǎn):電轉(zhuǎn)槽用去離子水淋洗晾干,加入1000ml電轉(zhuǎn)液。將膠平鋪于海綿上,滴加少許電轉(zhuǎn)液再次驅(qū)趕氣泡,封緊后放入電轉(zhuǎn)槽,注意膜在正極一側(cè)。降溫,將電泳槽置于冰水混合物中。恒流100mA過夜,或400mA,4h。注意不同蛋白的要求不同。
      干轉(zhuǎn):電轉(zhuǎn)液淋洗石墨電極,濾紙吸干,鋪上膠,再滴少許電轉(zhuǎn)液,以1.5mA/cm2凝膠面積轉(zhuǎn)移1-2小時。負載電壓不宜超過1V/cm2膠面積。
      電轉(zhuǎn)液配方:Tris-base3g,glycine14.4g,200ml甲醇/1L

       

      (五)封閉及雜交

      1)封閉:將膜從電轉(zhuǎn)槽中取出,去離子水與PBST或TTBS稍加漂洗,放于封閉液中緩慢搖蕩一小時。

      2)結(jié)合一抗:將含有一抗的封閉液滴加在搖床的塑料膜上,從封閉液中取出Western膜,濾紙貼角稍吸干,正面朝下貼在一抗上,注意不要產(chǎn)生氣泡,室溫下輕搖孵育一小時或4℃靜置過夜。在反應(yīng)體系外面罩一濕潤平皿以防止液體過多蒸發(fā)。

      3)洗滌:一抗孵育結(jié)束后,用PBST或TTBS漂洗膜后再浸洗三次,每次5-10min。

      4)結(jié)合二抗:選擇合適的二抗,根據(jù)鑒定方法選擇HRP或AP標記的抗體,按相應(yīng)比例稀釋(1:1000~1:10000),室溫輕搖一小時。

      5)洗滌:二抗孵育結(jié)束后,用PBST或TTBS漂洗膜后再浸洗三次,每次5-10min。

       

      (六)發(fā)光鑒定

      1.HRP-ECL發(fā)光法:

      將A、B發(fā)光液按比例稀釋混合。膜用去離子水稍加漂洗,濾紙貼角吸干,反貼法覆于A、B混合液滴上,熄燈至可見淡綠色熒光條帶(5min左右)后濾紙貼角吸干,置于保鮮膜內(nèi)固定于片盒中,迅速蓋上膠片,關(guān)閉膠盒,根據(jù)所見熒光強度曝光。取出膠片立即*浸入顯影液中1-2min,清水漂洗一下后放在定影液中至底片*定影,清水沖凈晾干,標定Marker,進行分析與掃描。

      2.AP-NBT/BICP顯色法:

      每片NBT/BICP可溶解于30ml水中,使用前將一片分裝在30個EP管中,每張3×9cm的膜取一管配成1ml即可。將PBST或TTBS洗滌過的膜用去離子水稍加漂洗,濾紙貼角吸干,反貼法覆于NBT/BICP溶液液滴上,并用不透明物體(如報紙)遮擋光線,顯色20s后每10s觀察一次,至條帶明顯或有本底出現(xiàn)時將膜揭起置去離子水中漂洗后放濾紙上晾干即可觀察與掃描。背景深淺與一抗的質(zhì)量及二抗的量有關(guān),當然如果暴光時間長達半小時,出現(xiàn)背景是正常的。

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